玉研儀器自主研發腦立體定位儀十四年，適用于大鼠、小鼠等實驗動物，經典十字操作臂實現精準定位，精度可達10微米，特制螺紋精密螺桿，穩固不晃動實現對特定腦區的精確定位，是神經環路研究、神經系統性疾病、神經藥理等領域內的重要研究設備，廣泛面向全國各大科研院校,醫院,高新企業,藥企,醫療機構等科研單位。

數顯型腦立體定位儀是我司根據國內多位神經科學研究領域專家的建議，并在國外多種同類產品的基礎上研發而成的，在原有標準型定位儀的三維操作臂上增加了位移傳感器和 LCD 數字顯示屏，使X、Y、Z 軸坐標可在顯示屏上實時顯示，一鍵清零，用戶無需前后查看數據，直接讀取 X、Y、Z軸移動距離，大大簡化實驗操作的同時提高數據精度。

腦立體定位儀又稱腦固定裝置（Stereotaxic Apparatus），它是利用動物顱骨外面的標志或其它參考點所規定的三度坐標系統，來確定皮層下某些神經結構的位置，是神經解剖、神經生理、神經藥理和神經外科等領域內的重要研究設備，可用于對神經結構進行定向的注射、刺激、破壞、引導電位等操作，可用于帕金森氏病、癲癇紅外腦內腫瘤等動物模型的建立，也可用于學習記憶，腦內神經干細胞移植，腦缺血等方面的研究。
 

功能特點：  

1)開放式的底盤結構：產品采取通用的U形底座開放式結構，方便進行多角度的操作；也可自由配置單臂、雙臂、單臂數顯、雙臂數顯等用于同時刺激和記錄。
2)廣域精準的調節性：可垂直方向180 度旋轉、水平方向360 度旋轉的操作臂為研究人員提供靈活、精確的定位；
3)讀數簡約性：X、Y、Z 三軸移動距離于 LCD 顯示屏實時顯示，用戶無需前后查看數據，直接讀取數值，可在任意位置點一鍵清零，根據腦圖譜直接定位，避免二次讀數及計算，大大簡化實驗操作；
4)外接設備的多樣性：夾持器部件可外接各種規格的探針、電極固定夾持器，執行單元，等，也可以根據用戶的不同實驗要求提供定制的固定夾持器以滿足多種實驗要求；
5)高精度性：進口位移傳感器和顯示屏質量穩定可靠，讀數精度10um，遠高于標準型定位儀；
抗干擾性：數字顯示屏采用直流電池供電，避免了交流電帶來的電子噪聲干擾，適用于電生理實驗；
 

“歸零"功能

可以使用戶快速的在實驗動物顱骨上設定一個參考點。因此可節省了用戶的寶貴時間并提高了精確度。歸零功能的設置很簡單，在每個軸的任何位置都可以設置為“零"，這樣使實驗變得簡單和直接。1。需找參考點“Bregma"。2.將所有的坐標值設為“零"。3.移動操縱臂到目標位置點。
 

存儲功能

目標的坐標值可以被保存到51900和51903等數字腦立體定位儀的顯示盒中。

標準配置包括的組件
51900（單臂）和51903（雙臂）數字腦立體定位系統帶有一個探針固定器（51631），大鼠類適配器（51621）（包含鼻夾和18°耳棒）。

SA-150型數顯小鼠腦定位儀  

SA-150型數顯大鼠腦定位儀  

SA-151型數顯型雙臂腦定位儀  

應用領域：  

腦立體定位儀是神經解剖、神經生理、神經藥理和神經外科等領域內的重要研究設備，可用于對神經結構進行定向的注射、刺激、破壞、引導電位等操作，可用于帕金森氏病、癲癇紅外腦內腫瘤等動物模型的建立，也可用于學習記憶，腦內神經干細胞移植，腦缺血等方面的研究。

相關配件及可選配件：  

型號規格：  

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部分參考文獻：
1. Albéri, L., Lintas, A., Kretz, R., Schwaller, B., & Villa, A. E. (2013). The calcium-binding protein parvalbumin modulates the firing 1 properties of the reticular thalamic nucleus bursting neurons. Journal of neurophysiology, 109(11), 2827-2841.
2. Sonati, T., Reimann, R. R., Falsig, J., Baral, P. K., O’Connor, T., Hornemann, S., Aguzzi, A. (2013). The toxicity of antiprion antibodies is mediated by the flexible tail of the prion protein. Nature, 501(7465), 102-106.
3. Ali, I., O’Brien, P., Kumar, G., Zheng, T., Jones, N. C., Pinault, D., O’Brien, T. J. (2013). Enduring Effects of Early Life Stress on Firing Patterns of Hippocampal and Thalamocortical Neurons in Rats: Implications for Limbic Epilepsy. PLOS ONE, 8(6), e66962.
4. Bell, L. A., Bell, K. A., & McQuiston, A. R. (2013). Synaptic Muscarinic Response Types in Hippocampal CA1 Interneurons Depend on Different Levels of Presynaptic Activity and Different Muscarinic Receptor Subtypes. Neuropharmacology.
5. Bolzoni, F., B?czyk, M., & Jankowska, E. (2013). Subcortical effects of transcranial direct current stimulation (tDCS) in the rat. The Journal of Physiology.
6. Bolzoni, F., B?czyk, M., & Jankowska, E. (2013). Subcortical effects of transcranial direct current stimulation (tDCS) in the rat. The Journal of Physiology.
7. Babaei, P., Tehrani, B. S., & Alizadeh, A. (2013). Effect of BDNF and adipose derived stem cells transplantation on cognitive deficit in Alzheimer model of rats. Journal of Behavioral and Brain Science, 3, 156-161.
8. Gilmartin, M. R., Miyawaki, H., Helmstetter, F. J., & Diba, K. (2013). Prefrontal Activity Links Nonoverlapping Events in Memory. The Journal of Neuroscience, 33(26), 10910-10914.
9. Feng, L., Sametsky, E. A., Gusev, A. G., & Uteshev, V. V. (2012). Responsiveness to nicotine of neurons of the caudal nucleus of the solitary tract correlates with the neuronal projection target. Journal of Neurophysiology, 108(7), 1884-1894.
10. Clarner, T., Diederichs, F., Berger, K., Denecke, B., Gan, L., Van der Valk, P., Kipp, M. (2012). Myelin debris regulates inflammatory responses in an experimental demyelination animal model and multiple sclerosis lesions. Glia, 60(10), 1468-1480.
11. Girardet, C., Bonnet, M. S., Jdir, R., Sadoud, M., Thirion, S., Tardivel, C., Troadec, J. D. (2011). Central inflammation and sickness-like behavior induced by the food contaminant deoxynivalenol: A PGE2-independent mechanism.Toxicological Sciences, 124(1), 179-191.
12. Hru?ka-Plocháň, M., Juhas, S., Juhasova, J., Galik, J., Miyanohara, A., Marsala, M., Motlik, J. (2010). A27 Expression of the human mutant huntingtin in minipig striatum induced formation of EM48+ inclusions in the neuronal nuclei, cytoplasm and processes. Journal of Neurology, Neurosurgery & Psychiatry, 81(Suppl 1), A9-A9.
13. Brooks, S., Jones, L., & Dunnett, S. B. (2010). A29 Frontostriatal pathology in the (C57BL/6J) YAC128 mouse uncovered by the operant delayed alternation task. Journal of Neurology, Neurosurgery & Psychiatry, 81(Suppl 1), A9-A10.
14. Yu, L., Metzger, S., Clemens, L. E., Ehrismann, J., Ott, T., Gu, X., Nguyen, H. P. (2010). A28 Accumulation and aggregation of human mutant huntingtin and neuron atrophy in BAC-HD transgenic rat. Journal of Neurology, Neurosurgery & Psychiatry, 81(Suppl 1), A9-A9.
15. Baxa, M., Juhas, S., Pavlok, A., Vodicka, P., Juhasova, J., Hru?ka-Plocháň, M., Motlik, J. (2010). A26 Transgenic miniature pig as an animal model for Huntington’s disease. Journal of Neurology, Neurosurgery & Psychiatry, 81(Suppl 1), A8-A9.

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